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Guia de investigação6 min read

Técnica estéril na reconstituição de peptídeos

A técnica estéril na reconstituição de peptídeos protege duas coisas: o peptídeo no frasco e a validade dos seus resultados. Uma solução de peptídeo reconstituída é aberta repetidamente ao longo de várias semanas. Cada punção da tampa é uma chance para bactérias, esporos de fungos, poeira ou células da pele entrarem. Uma vez lá dentro, eles crescem, consomem o peptídeo e liberam enzimas e endotoxinas que distorcem qualquer ensaio. Este guia descreve um fluxo de trabalho asséptico prático para um laboratório de pesquisa, os materiais necessários, as fontes comuns de contaminação e o padrão que define uma boa prática.

RevistaTécnica estéril na reconstituição de peptídeos

A técnica estéril na reconstituição de peptídeos protege duas coisas: o peptídeo no frasco e a validade dos seus resultados. Uma solução de peptídeo reconstituída é aberta repetidamente ao longo de várias semanas. Cada perfuração da rolha é uma chance para bactérias, esporos de fungos, poeira ou células da pele entrarem. Uma vez lá dentro, eles crescem, consomem o peptídeo e liberam enzimas e endotoxinas que distorcem qualquer ensaio. Este guia descreve um fluxo de trabalho asséptico prático para um laboratório de pesquisa, os materiais necessários, as fontes comuns de contaminação e o padrão que define a boa prática.

Por que a técnica estéril importa na reconstituição de peptídeos

Peptídeos liofilizados são enviados em frascos selados que foram envasados em condições controladas. O risco começa quando você abre o sistema. Você adiciona solvente através da rolha, retira solução através da rolha, e faz ambas as coisas em uma bancada com ar, poeira e superfícies cheias de microrganismos. A água bacteriostática contém 0,9% de álcool benzílico, que retarda o crescimento bacteriano, mas não elimina tudo e não tem efeito algum sobre enzimas que já estejam no frasco.

Austin e Elia revisaram os dados publicados sobre contaminação microbiana de doses preparadas assepticamente no Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences em 2009 (DOI 10.18433/J3JP4B). Preparações feitas em ambiente não controlado foram contaminadas com muito mais frequência do que as feitas em capela de fluxo laminar ou sala limpa. O ambiente e a técnica, e não o solvente, determinam se um frasco permanece limpo.

USP 797 como padrão de referência

A Farmacopeia dos Estados Unidos publica o padrão para preparações estéreis no Capítulo Geral 797 da USP. Ele foi escrito para farmácias, não para laboratórios de pesquisa, e muitos de seus requisitos, como salas limpas certificadas e monitoramento ambiental, vão além do que um ambiente de pesquisa precisa. Ainda assim, é a melhor referência porque descreve a lógica do trabalho asséptico: limpar as mãos, limpar as superfícies, controlar o ar, desinfetar todos os sítios críticos, nunca tocar em nada que vá entrar em contato com o produto e limitar o tempo em que uma preparação é mantida. As seções sobre higiene das mãos, paramentação, desinfecção de sítios críticos e data de uso após preparo são diretamente úteis.

Preparando uma área de trabalho limpa

O local ideal é uma capela de fluxo laminar. Se você não tiver uma, escolha uma bancada longe de portas, janelas, pias e circulação de pessoas, e desligue ventiladores que soprem sobre a superfície. Em seguida, prepare o espaço:

  • Esvazie a bancada de tudo que não é necessário para a tarefa.

  • Limpe a superfície com álcool isopropílico 70% e deixe secar.

  • Lave as mãos com sabão por pelo menos 30 segundos e seque-as com papel toalha limpo.

  • Calce luvas de nitrila novas e passe álcool nas luvas.

  • Prenda o cabelo e use jaleco com mangas fechadas.

  • Disponha todos os materiais antes de abrir qualquer coisa.

Não converse, não tussa e não se debruce sobre os materiais abertos.

Materiais para a reconstituição estéril de peptídeos

Tudo que tocar o solvente ou a solução deve ser estéril e usado uma única vez. A lista é curta:

  • Seringas estéreis descartáveis em um tamanho compatível com o volume, por exemplo 1 mL ou 3 mL. Abra a embalagem somente imediatamente antes do uso.

  • Agulhas estéreis descartáveis, uma para retirar o solvente e uma nova para cada retirada posterior. Uma agulha já usada uma vez não é mais estéril.

  • Swabs estéreis com álcool, embalados individualmente.

  • Água bacteriostática em frasco multidose selado, como nossa água bacteriostática 10 mL. A linha completa de solventes e consumíveis está na nossa coleção água bacteriostática e suprimentos de laboratório.

  • Um filtro de seringa estéril de 0,22 µm, opcional, para soluções que serão usadas em cultura celular ou armazenadas por mais tempo.

  • Etiquetas, marcador permanente e um recipiente para perfurocortantes.

Nunca reutilize uma seringa, mesmo para o mesmo frasco no mesmo dia. Nunca toque no corpo da agulha, na ponta da seringa ou no interior de uma tampa. Essas superfícies são chamadas de sítios críticos e devem entrar em contato apenas com material estéril.

Técnica estéril passo a passo na reconstituição de peptídeos

O método básico de reconstituição, incluindo o cálculo de concentração, está explicado no nosso guia sobre como reconstituir peptídeos. Os passos a seguir acrescentam a disciplina asséptica a esse método:

  1. Deixe o frasco de peptídeo atingir a temperatura ambiente dentro da caixa fechada. Abrir um frasco frio puxa umidade do ar para dentro do pó.

  2. Remova as tampas de alumínio com aba dos dois frascos. A rolha de borracha por baixo não é estéril na parte externa.

  3. Passe um swab com álcool novo em cada rolha e deixe o álcool secar completamente. Isso leva cerca de 30 segundos.

  4. Abra a seringa e acople a agulha sem tocar na ponta ou no cone da agulha.

  5. Aspire ar para a seringa em volume igual ao do solvente, insira a agulha pela rolha do solvente e injete o ar. Isso equaliza a pressão.

  6. Aspire o solvente lentamente e remova as bolhas de ar enquanto a agulha ainda estiver no frasco.

  7. Insira a agulha no frasco de peptídeo em ângulo, com o bisel voltado para o vidro, e deixe o solvente escorrer pela parede interna. Não o borrife sobre o pó.

  8. Retire a agulha e descarte-a imediatamente no recipiente para perfurocortantes.

  9. Agite o frasco suavemente em movimentos circulares até o pó dissolver. Não sacuda.

  10. Passe novamente um swab na rolha antes de armazenar o frasco e coloque uma tampa nova ou cobertura estéril sobre ela, se tiver.

Para cada retirada posterior, repita a sequência: swab, secagem, agulha e seringa novas, retirada, descarte, swab, armazenamento.

Filtrando a solução

Um filtro de seringa de 0,22 µm remove bactérias e esporos de fungos, mas não vírus nem endotoxinas. A filtração é útil quando a solução vai para cultura celular ou será armazenada por mais de algumas semanas. Aspire toda a solução para uma seringa estéril, acople o filtro e empurre a solução lentamente para dentro de um frasco estéril novo. Peptídeos podem aderir às membranas dos filtros, então use um filtro de baixa ligação proteica, como PVDF ou PES, e espere uma pequena perda de material. Para soluções que serão usadas em curto prazo, a filtração não é necessária.

Rotulagem e documentação

Um frasco sem rótulo é um frasco que você não consegue usar. Escreva o seguinte em cada frasco reconstituído:

  • Nome do peptídeo e número do lote, conforme o certificado de análise

  • Solvente e volume total adicionado

  • Concentração resultante em mg/mL

  • Data e hora da reconstituição

  • Suas iniciais

Registre os mesmos dados no caderno de laboratório. A USP 797 chama o limite de tempo de armazenamento de data de uso após preparo. Para um frasco de pesquisa em água bacteriostática a 2 a 8 °C, muitos laboratórios definem esse prazo em quatro semanas. As condições de armazenamento após a reconstituição estão no nosso guia sobre como armazenar peptídeos.

Fontes comuns de contaminação

A maioria dos frascos contaminados pode ser atribuída a alguns poucos erros:

  • Inserir a agulha antes que o álcool na rolha tenha secado

  • Tocar a agulha ou a ponta da seringa com o dedo ou contra a bancada

  • Reutilizar uma seringa ou agulha para uma segunda retirada

  • Deixar o frasco destampado sobre a bancada

  • Usar um frasco de solvente que está aberto há meses

Uma solução turva, partículas visíveis ou uma película na superfície são sinais de contaminação. Não use esse frasco. Descarte-o e reconstitua um novo. Os produtos da nossa linha de peptídeos testados em laboratório vêm com um certificado que mostra a pureza do lote no momento do teste. A técnica estéril mantém a solução nessa qualidade depois que você abre o frasco.

Perguntas frequentes sobre técnica estéril para peptídeos

Posso usar álcool 70% em spray em vez de swabs?
Sim, para a bancada e para as luvas. Para as rolhas, um swab embalado individualmente é melhor, porque o bico do spray é uma fonte de contaminação em si, e a rolha precisa de uma ação de limpeza, não apenas de umedecimento.
Quantas vezes posso perfurar um frasco multidose de água bacteriostática?
Não existe um número fixo para uso em pesquisa, mas cada perfuração aumenta o risco. Muitos laboratórios descartam um frasco de água bacteriostática 28 dias após a primeira perfuração, seguindo a prática de farmácias para frascos multidose.
O filtro de 0,22 µm remove endotoxinas?
Não. As endotoxinas são fragmentos da parede celular bacteriana, muito menores que os poros. O filtro remove as bactérias vivas antes que elas possam produzir endotoxinas. Ele não consegue limpar uma solução que já estava contaminada.

Fontes

  • United States Pharmacopeia. General Chapter 797: Pharmaceutical Compounding, Sterile Preparations. usp.org/compounding/general-chapter-797

  • Austin PD, Elia M. A systematic review and meta-analysis of the risk of microbial contamination of aseptically prepared doses in different environments. Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences. 2009. DOI 10.18433/J3JP4B

Este artigo descreve o manuseio laboratorial de compostos de pesquisa. Todos os produtos deste site são vendidos somente para uso em pesquisa laboratorial e não se destinam ao uso humano ou veterinário.

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Peptigram

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A nossa equipa editorial resume a investigação publicada sobre peptídeos em linguagem simples. Cada artigo liga às suas fontes primárias.